HEMO

• Prélever 3 paires idéalement

• Flacons hémocultures
  Aérobie et anaérobie
• Condition de stockage: température ambiante et à l'abri de la lumière

• 10ml / sang total pour les adultes
• Volume à prélever chez les enfants à adapter en fonction du poids:

1. Préparation du matériel

• Avant utilisation, il convient d’examiner les flacons d’hémoculture afin de vérifier l’absence de toute contamination :
• Absence de turbidité
• Bouchon ni protubérant, ni enfoncé
• Absence de fuite
• Placer un repère sur les flacons au marqueur correspondant au volume recommandé : environ 10 ml.
• Décapuchonner les 6 flacons et désinfecter le septum de chaque flacon avec de l’alcool modifié.
• Laisser le tampon de désinfection sur les flacons jusqu’au prélèvement.
• Préparer 2 tampons imbibés de bétadine alcoolique.

2. Désinfection et antisepsie

• Se frictionner les mains avec le SHA (Solution Hydro-Alcoolique).
• Repérer la veine.
• Désinfecter la zone en spirale, du centre vers la périphérie, recommencer l’opération avec le deuxième tampon imbibé.
• Ne pas repalper la veine avant la ponction veineuse.
• Attendre 30 secondes avant la ponction veineuse (temps de séchage nécessaire obligatoire pour éviter les faux négatifs).

3. Prélèvements

• A l’aide d’un butterfly
• Prélever un tube sec en premier (diminue le risque de contamination) (« Diversion technique »), mais non recommandé pour le diagnostic d’infection liée au cathéter.
• Puis prélever le flacon aérobie puis anaérobie
• Prélever en tout 4 à 6 flacons (idéalement 6).
• Agiter chaque flacon.
• Identifier tous les flacons.

• Dès que possible à température ambiante (24)
• Délai maximum: 12 h à température ambiante (24)

J+5

• 5 jours dans l'automate (15 jours sur demande spécifique)
• puis 7 jours à température ambiante

• Température ambiante : entre +15°C et +25°C
• Réfrigéré : température entre +2°C et +8°C
• Congelé : température -20°C